Η τεχνητή σπερματέγχυση (Τ.Σ.) και οι τεχνολογίες παραγωγής εμβρύων έχουν φέρει επανάσταση στην αναπαραγωγική διαχείριση των εκτροφών προβάτων και αιγών (γιδιών). Αυτές οι καινοτομίες στην αναπαραγωγή αποτελούν πολύτιμα εργαλεία για την ενίσχυση της γενετικής βελτίωσης, τη βελτίωση της παραγωγικότητας και την υποστήριξη της ευζωίας των προβάτων και των γιδιών. Το παρόν άρθρο συγκεντρώνει τα ευρήματα της πρόσφατης βιβλιογραφίας, προκειμένου να παρουσιάσει μια επισκόπηση των τρεχουσών πρακτικών, καινοτομιών και προκλήσεων στην τεχνητή σπερματέγχυση των προβάτων.
Οι παραδοσιακές μέθοδοι Τ.Σ. περιλαμβάνουν την εναπόθεση σπέρματος στον κόλπο ή στον τράχηλο. Αυτές οι τεχνικές είναι λιγότερο επεμβατικές, αλλά έχουν χαμηλότερα ποσοστά επιτυχίας εγκατάστασης εγκυμοσύνης, λόγω της ανατομικής πολυπλοκότητας του τραχήλου των προβάτων[4]. Ειδικά με κατεψυγμένο σπέρμα τα ποσοστά γονιμοποίησης είναι ακόμη χαμηλότερα με αυτές τις μεθόδους.
Η Λαπαροσκοπική τεχνητή σπερματέγχυση είναι η μέθοδος αναφοράς (gold standard) για τη χρήση κατεψυγμένου σπέρματος στα πρόβατα. Η μέθοδος αυτή παρακάμπτει τον τράχηλο τοποθετώντας το σπέρμα απευθείας στα κέρατα της μήτρας, επιτυγχάνοντας ποσοστά γονιμοποίησης από 60 έως 75% [2]. Παρά την αποτελεσματικότητά της, η Λαπαροσκοπική Τ.Σ. απαιτεί εξειδικευμένο εξοπλισμό και εκπαίδευση, γεγονός που την καθιστά πιο δαπανηρή και λιγότερο προσιτή για τους μικρούς παραγωγούς.
Η Διατραχηλική τεχνητή σπερματέγχυση και η μη χειρουργική ανάκτηση εμβρύων (NSER) έχουν αποκτήσει κάποιο ενδιαφέρον τα τελευταία χρόνια, ειδικά στις αίγες (γίδες) και επιλεγμένες φυλές προβάτων. Οι εξελίξεις στα πρωτόκολλα ορμονικής διαστολής του τραχήλου της μήτρας έχουν βελτιώσει την δυνατότητα χρήσης αυτών των μεθόδων στα πρόβατα, προσφέροντας λιγότερο επεμβατικές και πιο φιλικές προς την ευζωία των προβάτων εναλλακτικές λύσεις [1], αλλά εξακολουθούν να απαιτούν εφαρμογή σε μεγάλη κλίμακα για να γίνουν μια κατάλληλη και αξιόπιστη εναλλακτική λύση.
Οι Spanner et al. (2024) τονίζουν ότι η ποιότητα του σπέρματος είναι καθοριστικής σημασίας. Οι βασικοί παράμετροι εκτίμησης της ποιότητας περιλαμβάνουν:
Η κρυοσυντήρηση καταστρέφει τις μεμβράνες και το DNA των σπερματοζωαρίων. Οι βέλτιστες συγκεντρώσεις κατά την κατάψυξη (200-400 εκατομμύρια σπερματοζωάρια/mL) και οι μέθοδοι συσκευασίας (πέλλετ έναντι καλαμάκια) επηρεάζουν σημαντικά τη βιωσιμότητα μετά την απόψυξη [2].
Η Λαπαροσκοπική τεχνητή σπερματέγχυση επιτρέπει τη μείωση των δόσεων του σπέρματος (έως και 20 εκατομμύρια σπερματοζωάρια), ενισχύοντας την αποτελεσματικότητα της χρήσης των κορυφαίων αρσενικών [2]. Στην Τραχηλική τεχνητή σπερματέγχυση, το σπέρμα χρησιμοποιείται νωπό με σημαντικά υψηλότερη δόση κινητών σπερματοζωαρίων, που απαιτεί 60 έως 100 εκατομμύρια σπερματοζωάρια ανά δόση. Επίσης, είναι απαραίτητο να διατηρούνται τα σπερματοζωάρια σε θερμοκρασία 28-30 °C μετά τη συλλογή και η εναπόθεση του σπέρματος πρέπει να γίνεται το συντομότερο δυνατόν, προκειμένου να διατηρηθεί η καλή γονιμότητα, με στόχο τα 30 έως 60 λεπτά από τη συλλογή του σπέρματος έως την απόθεση στον τράχηλο, γεγονός που καθιστά αυτή την τεχνική δύσκολη από άποψη υλοποίησης[4].
Η ηλικία, ο Δείκτης Θρεπτικής Κατάστασης (Δ.Θ.Κ.), το σωματικό βάρος και το ενδοκοιλιακό λίπος επηρεάζουν τα αναπαραγωγικά αποτελέσματα. Τα πρόβατα ηλικίας 1,5 έως 4,5 ετών με Δ.Θ.Κ. 2,5 έως 3,5 παρουσιάζουν τη βέλτιστη γονιμότητα [2].
Προκειμένου να προχωρήσει η Τεχνητή Σπερματέγχυση σε συγκεκριμένο χρόνο, ο οίστρος και η ωορρηξία των προβάτων πρέπει να συγχρονιστούν. Τα πιο αποτελεσματικά προγράμματα βασίζονται στον συνδυασμό σπόγγων προγεσταγόνων, ο ρόλος των οποίων είναι να «μιμούνται» έναν τεχνητό δίοιστρο και συνήθως τοποθετούνται για 12 έως 14 ημέρες, ενώ κατά την αφαίρεσή τους, χορηγείται μία εφάπαξ δόση ίππειας χοριακής γοναδοτροπίνης (equine Chorionic Gonadotropin, eCG). Aυτή η σύνθετη γλυκοπρωτεΐνη έχει ικανότητα σύνδεσης τόσο με τους υποδοχείς της FSH (Follicle-Stimulating Hormone, ωοθυλακιοτρόπος ορμόνη) όσο και με τους υποδοχείς της LH (Luteinizing Hormone, ωχρινοτρόπος ορμόνη), επιτρέποντας την ανάπτυξη και την ελεγχόμενη ωορρηξία περισσότερων από ενός ωοθυλακίων, ανάλογα με τη χορηγούμενη δόση. Ο χρόνος της Τ.Σ. (συνήθως 48-60 ώρες μετά την αφαίρεση των σπόγγων) είναι καθοριστικής σημασίας.
Το θερμικό στρες, η υγρασία και οι εποχιακές αλλαγές επηρεάζουν τη γονιμότητα. Οι υψηλές θερμοκρασίες (>32 °C) μειώνουν την ωορρηξία και την επιβίωση των εμβρύων. Οι βροχοπτώσεις και η διαθεσιμότητα επαρκούς ποιοτικής τροφής παίζουν επίσης ρόλο [2][3].
Η Λαπαροσκοπική Τεχνητή Σπερματέγχυση, αν και αποτελεσματική, απαιτεί πολλούς πόρους. Οι αναλύσεις κόστους-οφέλους υποδεικνύουν κερδοφορία μετά τη σπερματέγχυση σε περίπου 71 προβατίνες. Οι μη χειρουργικές μέθοδοι προσφέρουν χαμηλότερο κόστος και καλύτερα επίπεδα ευζωίας των προβάτων, αλλά απαιτούν περαιτέρω βελτίωση για να υιοθετηθούν ευρέως [1].
Η τεχνητή σπερματέγχυση και οι τεχνολογίες παραγωγής εμβρύων προσφέρουν τεράστιες προοπτικές για τον κλάδο της αιγοπροβατοτροφίας και μπορούν να ενισχύσουν την οικονομία της προβατοτροφίας στη χώρα μας.
Η Λαπαροσκοπική Τεχνητή Σπερματέγχυση (Τ.Σ.) παραμένει το σημείο αναφοράς για τη χρήση κατεψυγμένου σπέρματος.
Ωστόσο, οι αναδυόμενες μη χειρουργικές μέθοδοι και η καλύτερη κατανόηση των βιολογικών και περιβαλλοντικών παραγόντων ανοίγουν το δρόμο για πιο αποτελεσματικές, ηθικές και εφαρμόσιμες στρατηγικές στην αναπαραγωγική διαχείριση της εκτροφής προβάτων και αιγών.
1. Souza-Fabjan, J. M. G., et al. (2023). Advances in non-surgical embryo recovery and transfer in small ruminants. Reproduction in Domestic Animals.
2. Spanner, M. A., et al. (2024). Semen quality and fertility in sheep: A comprehensive review. Animal Reproduction Science.
3. Myers, J. R., & Kasimanickam, R. (2025). Environmental impacts on reproductive efficiency in sheep. Theriogenology.
4. Gibbons, A. (2019). Artificial insemination in sheep: Techniques and outcomes. Small Ruminant Research.
5. Abril-Parreño, L. (2021). Ewe breed differences in cervical anatomy and cervicovaginal mucus properties: An international study. Theriogenology.